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流式細(xì)胞術(shù)固定透化解決方案

更新時間:2024-12-06

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流式細(xì)胞術(shù)(FlowCytometry)是一種用于分析細(xì)胞群體的實驗技術(shù),能夠同時分析單個細(xì)胞的多個特性。為了提高檢測的靈敏度和準(zhǔn)確性,細(xì)胞通常需要經(jīng)過固定(Fixation)和透化(Permeabilization)處理,以便檢測細(xì)胞內(nèi)的分子(如蛋白質(zhì)、DNA、RNA等)。下面是流式細(xì)胞術(shù)中固定和透化的常見解決方案。  
一、固定(Fixation)  
固定的目的是保持細(xì)胞內(nèi)的結(jié)構(gòu)和分子狀態(tài),防止細(xì)胞在實驗過程中發(fā)生變化,通常使用化學(xué)固定劑進(jìn)行處理。  
常用的固定劑:  
甲醛(Formaldehyde)  
常用濃度:1-4%  
作用:甲醛能夠通過與細(xì)胞內(nèi)的蛋白質(zhì)交聯(lián),固定細(xì)胞的結(jié)構(gòu)。它對細(xì)胞膜和細(xì)胞內(nèi)部結(jié)構(gòu)具有較強的穿透性,常用于維持細(xì)胞形態(tài)和免疫標(biāo)記物的穩(wěn)定性。  
使用方法:  
將細(xì)胞懸浮液與適量甲醛溶液混合。  
4°C保存固定的細(xì)胞,避免固定時間過長,通常固定時間為15-30分鐘。  
固定后的細(xì)胞可用PBS洗滌,并根據(jù)需要進(jìn)行透化處理。  
乙醇(Ethanol)  
常用濃度:70%(體積分?jǐn)?shù))  
作用:乙醇是一種廣泛使用的固定劑,適合固定DNA、RNA等分子,并能固定細(xì)胞形態(tài)。乙醇的優(yōu)勢在于其良好的穿透性和與細(xì)胞膜的作用方式,可以同時破壞細(xì)胞膜,適用于之后的透化步驟。  
使用方法:  
細(xì)胞懸浮液加入70%乙醇,輕輕混勻。  
在-20°C或4°C保存固定的細(xì)胞,常見的固定時間為30分鐘到1小時。  
固定后的細(xì)胞可用PBS洗滌,并進(jìn)行透化處理。  
固定后注意事項:  
固定細(xì)胞后需要盡快進(jìn)行透化處理,避免固定過度導(dǎo)致標(biāo)記失效。  
固定過程中要保持溫度低(4°C)以減少細(xì)胞損傷。  
固定劑的濃度和時間對流式細(xì)胞術(shù)結(jié)果有很大影響,需要優(yōu)化。  
二、透化(Permeabilization)  
透化的目的是使細(xì)胞膜或細(xì)胞內(nèi)的膜結(jié)構(gòu)變得可滲透,從而使抗體或探針能夠進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)部,標(biāo)記細(xì)胞內(nèi)的分子。  
常用的透化劑:  
TritonX-100  
濃度:0.1%-0.5%  
作用:TritonX-100是一種非離子表面活性劑,能夠有效地破壞細(xì)胞膜,使抗體能夠進(jìn)入細(xì)胞。它對細(xì)胞膜有較強的破壞作用,可以透化大多數(shù)細(xì)胞類型。  
使用方法:  
固定后的細(xì)胞加入0.1%-0.5%TritonX-100溶液,輕輕混勻。  
在室溫下孵育10-20分鐘,或根據(jù)實驗需要優(yōu)化透化時間。  
孵育后,細(xì)胞用PBS洗滌,去除透化劑。  
Saponin  
濃度:0.05%-0.1%  
作用:Saponin是一種植物來源的透化劑,作用較為溫和,常用于細(xì)胞內(nèi)標(biāo)記物的檢測,特別是在對細(xì)胞膜破壞較為敏感的實驗中。它通過選擇性地破壞細(xì)胞膜的膽固醇組成,打開細(xì)胞膜上的孔隙。  
使用方法:  
固定后的細(xì)胞加入0.05%-0.1%Saponin溶液。  
在室溫下孵育5-10分鐘,透化效果較溫和。  
孵育后,用PBS洗滌細(xì)胞。  
Methanol(甲醇)  
濃度:100%  
作用:甲醇是一種常見的透化劑,特別適用于細(xì)胞內(nèi)蛋白的檢測。它通過抽提細(xì)胞內(nèi)的脂質(zhì)成分,從而使抗體能夠進(jìn)入細(xì)胞。甲醇透化較強,但有可能破壞細(xì)胞內(nèi)的某些結(jié)構(gòu),因此通常用于固定后透化。  
使用方法:  
固定后的細(xì)胞加入冷卻的100%甲醇。  
在-20°C保存30分鐘或更長時間。  
完成透化后,用PBS洗滌。  
透化后注意事項:  
透化時間和濃度過長可能會導(dǎo)致細(xì)胞膜或細(xì)胞內(nèi)部結(jié)構(gòu)的過度破壞,影響實驗結(jié)果。  
不同細(xì)胞類型對透化劑的反應(yīng)不同,可能需要優(yōu)化透化條件。  
透化和固定處理后,應(yīng)盡量避免長時間暴露在室溫下,避免細(xì)胞損傷。  
三、固定與透化的綜合流程  
細(xì)胞培養(yǎng)與收集  
收集待檢測的細(xì)胞,使用PBS洗滌去除培養(yǎng)基。  
固定處理  
根據(jù)實驗需要選擇固定劑(如甲醛、乙醇等)。  
按照推薦的濃度和時間對細(xì)胞進(jìn)行固定。  
固定后使用PBS洗滌細(xì)胞。  
透化處理  
根據(jù)實驗要求選擇透化劑(如TritonX-100、Saponin、Methanol等)。  
按照推薦濃度和時間對細(xì)胞進(jìn)行透化。  
透化后用PBS洗滌細(xì)胞,去除透化劑。  
抗體染色與檢測  
固定和透化后的細(xì)胞可以進(jìn)行表面標(biāo)記或內(nèi)部分子標(biāo)記。  
使用適當(dāng)?shù)臒晒鈽?biāo)記抗體,進(jìn)行流式細(xì)胞術(shù)分析。  
四、總結(jié)  
在流式細(xì)胞術(shù)中,細(xì)胞固定和透化是兩個非常關(guān)鍵的步驟。固定劑能夠保持細(xì)胞結(jié)構(gòu)并防止分子降解,而透化劑能夠使抗體或其他探針進(jìn)入細(xì)胞,標(biāo)記內(nèi)部分子。選擇適當(dāng)?shù)墓潭ê屯富瘲l件對于確保實驗的準(zhǔn)確性和重復(fù)性至關(guān)重要。因此,建議根據(jù)細(xì)胞類型、實驗?zāi)繕?biāo)和抗體性質(zhì)來優(yōu)化固定和透化的方案。
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